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ACE siRNA对人脐静脉内皮细胞ET1表达的影响
 

ACE siRNA对人脐静脉内皮细胞ET1表达的影响

2011-08-24 访问量:210
作者:杨勇,王玮,黄从新,周明,方志成,何朝荣 作者单位:1武汉大学人民医院心血管内科,湖北 武汉 430060;2郧阳医学院附属太和医院心血管内科,湖北 十堰 442000

  【摘要】   目的:观察小干扰RNA(siRNA)对人脐静脉内皮细胞CRL1730血管紧张素转换酶(ACE)mRNA与蛋白表达的作用及对内皮素1(ET1)表达的影响。方法:设计3条针对人ACE基因的siRNA,脂质体转染CRL1730细胞,RTPCR检测ACE mRNA的表达,ELISA法检测ACE蛋白含量;并比较ACE siRNA与卡托普利(Captopril)对血管紧张素II同步处理6、12、24 h 后CRL1730细胞ET1的表达。 结果:ACE siRNA能够抑制ACE mRNA及蛋白表达,以48 h为甚(mRNA水平下调71.01%;蛋白水平下调68.13%,均P<0.01)。ACE siRNA和Captopril均能抑制CRL1730细胞ET1表达(P<0.05),ACE siRNA抑制作用优于Captopril(P<0.05)。结论:ACE siRNA能有效下调ACE的表达,并抑制血管紧张素II诱导的ET1表达。

  【关键词】 小干扰RNA 人脐静脉内皮细胞 血管紧张素转换酶 血管紧张素II 内皮素 1

  Effects of ACE siRNA on the Expression of Endothelin1 in Human Umbilical Vein Endothelial Cells YANG Yong1,2,WANG Wei2,HUANG Congxin1*,ZHOU Ming2,FANG Zhicheng2,HE Chaorong2 (Department of Cardiology,1Renmin Hospital,Wuhan Unviersity,Wuhan,Hubei 430060;2Taihe Hospital,Yunyang Medical College,Shiyan,Hubei 442000,China)

  Abstract:Objective To observe the effects of ACE siRNA on the expression of angiotensin converting enzyme mRNA in human umbilical vein endothelial cells CRL1730 and the expression of endothelin1.Methods Three siRNAs targeted against ACE gene were designed and synthesized,transfected into CRL1730 with liposome,the expression of ACE mRNA and protein was detected with RTPCR and ELISA, respectively.The expression of endothelin1 stimulated with angiotensin Ⅱand ACE siRNA or captopril at the time point of 6 h,12 h and 24 h were compared.Results The expression of ACE mRNA and protein could inhibited with ACE siRNA,and reached the peak at 48 h(mRNA decreased 71.01%,P<0.01;protein decreased 68.13%).ACE siRNA and captopril all could inhibit the expression of ET1 in CRL1730 cells(P<0.05),and the effect of ACE siRNA was better than that of captopril (P<0.05).Conclusion RNA interference could effectively downregulate the expression of ACE and inhibit the expression of ET1 induced with angiotensinⅡ.

  Keywords:Small interfering RNA;Human umbilical vein endothelial cells;Angiotensin converting enzyme;Angiotensin II;Endothelin1

  高血压基因治疗比传统药物能更持续的控制血压,显著改善高血压导致的靶器官损害,为高血压治疗开辟了新的研究领域[1]。RNA干扰(RNA interference,RNAi)是双链RNA介导的转录后基因沉默,其沉默效应及稳定性优于反义寡核苷酸,现已成为基因沉默技术的主要手段[2]。本研究观察小干扰RNA(small interfering RNA,siRNA)对血管紧张素转换酶(angiotensin converting enzyme,ACE)基因与蛋白水平的调控作用以及对内皮细胞内皮素1(endothelin1,ET1)的影响,为RNAi技术在高血压基因治疗领域中的应用提供治疗靶点。

  1 材料与方法

  1.1 材料

  人脐静脉内皮细胞株(ATCC编号:CRL1730)购于武汉大学中国典型培养物保藏中心。siRNA由广州市锐博生物科技有限公司设计合成。LipofectamineTM 2000、Trizol试剂(美国Invitrogen公司);逆转录试剂盒(立陶宛Fermentas公司);ACE ELISA Kit、ET1 ELISA Kit(美国R&D Systems公司);血管紧张素II(Angiotensin II,AngII;Sigma公司)。卡托普利标准品(Captopril,石家庄岩峰医药科技有限公司);细胞裂解液(含50 mmol/L Tris·HCl,0.15 mmol/L NaCl,1% Triton X100,1% CHAPS,用前加入PMSF)。

  1.2 方法

  1.2.1 siRNA靶点序列和PCR引物序列:根据siRNA设计原则[3],针对人ACE mRNA序列(Genbank编号:NM-000789.2),设计三条siRNA,siRNA1针对于2739~2757位点:5′CCACAGAGGCTATGCTAAA3′,siRNA2针对于3261~3279位点:5′GCATCACCAAGGAGAACTA3′,siRNA3针对于2083~2101位点:5′GCAG AAGAACATGCAAATA3′,同时合成阴性对照序列(NC control)并于5′端加FAM荧光基团;经BLAST工具分析这些序列与人其他基因无明显同源性。内参GAPDH引物序列:上游5′ CAAGGTCATCCATGACAACTTTG3′,下游5′GTCCACCACCCTGTTGCTGTAG3′,扩增片段为496 bp。ACE引物序列:上游5′GTTTGTGGAGGAATATGACCG3′,下游5′CCTTCTTTATGATCCGCTT G3′,扩增片段为218 bp。

  1.2.2 转染效率测定:3.0×105个/mL密度接种细胞于6孔板,用不含抗生素的10%胎牛血清DMEM培养液培养12 h,细胞融合至30%~50%进行转染。每孔加入6.0 μL NC control(总量120 pmol,培养液终浓度60 nmol/L)与4.0 μL LipofectamineTM2000,按照LipofectamineTM 2000说明书操作进行转染。转染后12 h于荧光显微镜下蓝光480 nm波长激发荧光,计算3个不同视野下绿色荧光细胞数与自然光下总细胞数的百分比,取其平均值为转染效率。

  1.2.3 ACEsiRNA筛选和ACE mRNA、ACE蛋白表达检测:分为5组,每组复3孔;分别为siRNA1组,siRNA2组,siRNA3组、阴性对照组(NC control)与空白对照组(control)。接种细胞后,前4组使用与1.2.2相同的剂量与方法转染入相应siRNA,空白对照组不作处理,转染后48 h与72 h RTPCR法检测ACE mRNA表达,ELISA法检测ACE蛋白的表达。

  Trizol法提取细胞总RNA,取1 μg按照试剂盒说明书合成cDNA并作为模板行PCR扩增,以GAPDH为内参。PCR 反应条件: 94 ℃变性3 min,94 ℃退火30 s,58 ℃(GAPDH退火温度) 30 s,72 ℃延伸1 min,循环 32次,最后72 ℃ 延伸10 min。ACE退火温度为 53 ℃,循环35次,余条件相同。产物进行1.5%琼脂糖凝胶电泳,凝胶成像分析系统摄像分析。用ACE的条带灰度值与GAPDH的条带灰度值之比代表ACE相对含量。细胞裂解液提取各组细胞总蛋白,按照ELISA试剂盒说明书操作检测ACE蛋白。

  1.2.4 ACEsiRNA对内皮素1表达影响:使用1.2.3筛选的有效siRNA进行实验。细胞分为4组,每组复6孔:分别为空脂质体对照组(control),AngⅡ组,siRNA组,captopril组。4组均加入2.0 μL/孔 LipofectamineTM 2000,siRNA组同时加入3 μL siRNA(培养液终浓度60 nmol/L)进行转染操作。转染完成后培养至24 h,除control组外,其余3组换用含10-7mol/L AngⅡ的DMEM高糖培养液,captopril组同时加入captopril至终浓度为10-7mol/L。换液前及换液加药处理后6、12、24 h取各孔培养液上清100 μL,按ELISA试剂盒操作说明检测ET1含量。

  1.3 统计学处理

  数据采用均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组内前后比较采用配对t检验,以双侧P<0.05为有统计学差异,用SPSS 13.0统计软件包对数据进行分析。

  2 结果

  2.1 荧光转染效率测定

  图2 RTPCR产物凝胶电泳图

  注:M:DNA Marker,C:control,S1:siRNA1组,S2:siRNA2组,S3:siRNA3组NC:NC control 组。218 bp处为ACE条带,496 bp处为GAPDH条带。

  荧光显微镜下可见被转染入FAM荧光的细胞呈点状分布(图1),转染效率为65.97%。

  2.2 ACEsiRNA对ACE mRNA表达的作用

  与control组对比,siRNA2组48 h和72 h ACE mRNA的表达均下调(P<0.01),以48 h为甚(P<0.05),下调比例达到71.01%;siRNA1组与siRNA3组转染后72 h ACE mRNA 表达无统计学差异(P>0.05);阴性对照组均未见明显抑制作用(P>0.05),见图2。

  2.3 ACE siRNA对ACE蛋白表达影响

  与control组对比,siRNA2组48 h及72 h ACE蛋白表达均显著下调(P<0.01),以48 h最为明显(P<0.05),下调比例达到68.13%;siRNA1组仅48 h有抑制作用(P<0.05)。siRNA3组与NC control组均无明显抑制作用(P>0.05),见图3。

  2.4 ACE siRNA对CRL1730细胞ET1表达的影响

  从6 h起,Ang II能促进CRL1730细胞ET1表达,12 h达高峰(P<0.01);6 h至12 h,ACE siRNA和captopril 均能抑制ET1表达(P<0.05);ACE siRNA抑制作用优于captopril,从12 h一直持续到24 h(P<0.05),见表1。 注:与空白对照组比较#P<0.01,▲P<0.05,表1 ACE siRNA对CRL1730细胞ET1表达的影响注:AngII组组内比较:与加药前与加药12 h比较▲P<0.01,与加药后24 h比较△P<0.05;siRNA组与AngII组比较,※P<0.05;#P<0.01,captopril组与Ang II组比较,●P<0.05,*P>0.05;captopril组与siRNA组比较,☆P>0.05,★P<0.05

  3 讨论

  RNAi技术已广泛用于高血压病、高脂血症、动脉粥样硬化、缺血再灌注损伤、心肌病等多个领域,显示出其在心血管疾病基因治疗中的巨大潜力[4]。高血压患者血浆及组织ACE的活性增强,促进Ang I分解成为Ang II,降解缓激肽、Ang(17)肽等可拮抗Ang II作用的细胞因子,诱导内皮细胞ET1表达增加,维持血压的持续升高,导致血管内膜增殖与动脉粥样硬化斑块形成,在高血压的病理生理过程有着重要作用[5]。利用RNAi技术可沉默ACE,进而可能控制血压及改善高血压导致的靶器官损害。

  siRNA 作用于mRNA 的不同区域产生的沉默效能并不相同,因此在进行RNAi研究时必须设计多个序列进行筛选[6]。采用化学合成的siRNA进行RNAi研究,相对于构建质粒及病毒载体而言具有合成简便、费用相对低廉的优点,适合于快速筛选有效序列。本研究采用脂质体转染方法,将携带FAM荧光的siRNA成功转染CRL1730细胞,效率可达65.97%;且人ACE mRNA 3 2613 279位点的siRNA能够在培养液终浓度为60 nmol/L的条件下显著抑制细胞ACE mRNA与蛋白的表达。而Morishita等[7]使用脂质体转染的方法,需要3 μmol/L的反义寡核苷酸才能够有效抑制ACE的活性;Miyagishi等[8]研究也发现针对相同的基因进行沉默时,siRNA达到半数抑制率所需要的浓度比反义寡核苷酸的浓度要低100~10 000倍。

  RNAi诱导基因沉默时,首先将双链RNA分解成为21~23 nt长度的siRNA;siRNA的反义链与核酸内切酶Dicer酶、反式RNA结合蛋白结合,形成具有剪切靶mRNA作用的诱导沉默复合体,进而特异性降解靶mRNA,减少转录后mRNA向蛋白的翻译[2]。本研究发现化学合成的ACE siRNA能够诱导ACE mRNA的降解,ACE蛋白的表达也随之降低;且在48 h能够达到最大的沉默效果,72 h则有所下降,与Chiu等[9]的研究结果相似。可能与哺乳动物细胞缺乏RNA诱导的RNA聚合酶,RNAi在细胞间不能传递与放大有关,也可能与siRNA经过细胞分裂及内源性核酸酶降解后被稀释有关。

  本研究观察到Ang II能够增强CRL1730细胞ET1的表达,与Ang II增强ET1前体原mRNA 转录与表达、提高内皮素转化酶活性,刺激ET1合成有关[10]。Captopril和siRNA均能够抑制由Ang II诱导的ET1表达;captopril与ACE蛋白活性中心结合抑制其活性,siRNA则通过降解ACE mRNA直接下调ACE蛋白的表达。两者均能够减少由ACE分解Ang I产生的Ang II,促进血管紧张素转换酶2将Ang II降解成为Ang (1-7)肽,拮抗Ang II的作用[11];同时减少缓激肽降解,与内皮细胞的缓激肽β2受体作用减少ET1的表达;还能够降低内皮细胞氧自由基的活性,增加NO合成,减少ET1的释放[12]。进一步研究发现,siRNA能够持续抑制ET1表达,抑制作用比卡托普利强,其机制可能为卡托普利具有抑制ACE活性作用的巯基极易发生氧化,有效作用浓度不断降低;而导入细胞内的siRNA对ACE蛋白表达的下调作用相对稳定。利用ACE siRNA能够有效稳定的下调内皮细胞ACE的表达,以调节Ang II诱导的内皮细胞ET1的表达,可作为研究高血压基因治疗的工具进行深入研究。

  【参考文献】

  [1]Raizada MK,Der Sarkissian S.Potential of gene therapy strategy for the treatment of hypertension[J].Hypertension,2006,47(1):6-9.

  [2]Bhindi R,Fahmy RG,Lowe HC,et al.Brothers in arms:DNA enzymes,short interfering RNA,and the emerging wave of smallmolecule nucleic acidbased genesilencing strategies[J].Am J Pathol,2007,171(4):1 079 1 088.

  [3]Reynolds A,Leake D,Boese Q,et al.Rational siRNA design for RNA interference[J].Nat Biotechnol,2004,22(3):326-330.

  [4]Tang Y,Ge YZ, Yin JQ.Exploring in vitro roles of siRNA in cardiovascular disease[J].Acta Pharmacol Sin,2007,28(1):1-9.

  [5]Paul M,Poyan Mehr A,Kreutz R,et al.Physiology of local reninangiotensin systems[J].Physiol Rev,2006,86(3):747-803.

  [6]KretschmerKazemi Far R,Sczakiel G.The activity of siRNA in mammalian cells is related to structural target accessibility:a comparison with antisense oligonucleotides[J].Nucleic Acids Res,2003,31(15):4 417-4 424.

  [7]Morishita R,Gibbons GH,Tomita N,et al.Antisense oligodeoxynucleotide inhibition of vascular angiotensinconverting enzyme expression attenuates neointimal formation: evidence for tissue angiotensinconverting enzyme function[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2000,20(4):915-922.

  [8]Miyagishi M,Hayashi M,Taira K,et al.Comparison of the suppressive effects of antisense oligonucleotides and siRNAs directed against the same targets in mammalian cells[J].Antisense Nucleic Acid Drug Dev,2003,13(1):1-7.

  [9]Chiu YL,Rana TM.RNAi in human cells:basic structural and functional features of small interfering RNA[J].Mol Cell,2002,10(3):549-561.

  [10]Rossi GP,Sacchetto A,Cesari M,et al.Interactions between endothelin1 and the reninangiotensinaldosterone system[J].Cardiovasc Res,1999,43(2):300-307.

  [11]Der Sarkissian S,Huentelman MJ,Stewart J,et al.ACE2:a novel therapeutic target for cardiovascular diseases[J].Prog Biophys Mol Biol,2006,91(12):163-198.

  [12]Giovambattista D,Davide G,Giuseppe C,et al.Different effects of angiotensin converting enzyme inhibitors on endothelin1 and nitric oxide balance in human vascular endothelial cells:evidence of an oxidantsensitive pathway[J].Mediators Inflamm,2008,30(5):81-87.

 
 

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